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Tipo A
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Código |
Competencias Específicas | | | CE5 |
Conocer los principios, la instrumentación y las aplicaciones de las principales técnicas de Bioquímica y Biología Molecular |
| | CE6 |
Saber diseñar y aplicar protocolos experimentales de laboratorio, especialmente en los ámbitos bioquímicos, microbiológicos y en biología molecular, valorando sus riesgos, y elementos de seguridad |
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Tipo B
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Código |
Competencias Transversales |
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Tipo C
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Código |
Competencias Nucleares |
| Resultados de aprendizaje |
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Tipo A
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Código |
Resultados de aprendizaje |
| | CE5 |
Conoce el equipamiento básico de un laboratorio de cultivos celulares
Conoce las metodologías básicas utilizadas en cultivos celulares, así como sus apllicacions en el campo de la bioquímica y la biotecnología
| | | CE6 |
Diseña experimentos y comprende las limitaciones de la aproximación experimental en el ámbito de los cultivos celulares
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Tipo B
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Código |
Resultados de aprendizaje |
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Tipo C
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Código |
Resultados de aprendizaje |
| tema |
Subtema |
| Sesión 1. Introducción a los cultivos de células animales. |
Breve historia de los cultivos celulares. Concepto actual, aplicaciones y áreas de investigación. Tipo de cultivos de tejidos. Biología de la célula en cultivo. |
| Sesión 2. El laboratorio de cultivos celulares. |
Equipamiento y diseño. Niveles de bioseguridad. Clasificación de los agentes biológicos. Concepto de SDS, PPEs y SLP. |
| Sesión 3. Condiciones físico-químicas, medios y superficies de cultivo. |
Temperatura, pH y osmolaridad. Composición, preparación, selección y optimización de los medios de cultivo. Adaptación a medios libres de suero. Superficies de crecimiento celular. |
| Sesión 4. Contaminación biológica. |
Técnica aséptica. Principales agentes contaminantes biológicos: bacterias, levaduras, hongos, virus y micoplasmas. Procedimientos y métodos de detección. |
Sesión 5. Cuantificación, citotoxicidad y muerte celular.
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Cámara de Neubauer. Ensayos de viabilidad y citotoxicidad celular. |
| Sesión 6. Introducción a la Citometría de flujo. |
Breve historia. Qué datos nos aporta la CMF? Aspectos prácticos. FACS |
| Sesión 7. Técnicas básicas de manipulación de celulas ulas animales en cultivo. |
Cambio de medio. Pase o subcultivo. Criopreservación. Transformación y inmortalización. Transporte de células. Caracterización celular. |
| Sesión 9. Biotecnología de células animales y tejidos. |
Células pluripotentes ( "stem cells") vs. cultivos especializados. Tecnología de aislamiento y cultivo de células pluripotentes. Técnicas de diferenciación celular. Reconstrucción de tejidos y órganos mediante co-cultivo de tipo primario. |
| Metodologías :: Pruebas |
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Competencias |
(*) Horas en clase
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Horas fuera de clase
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(**) Horas totales |
| Actividades introductorias |
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2 |
0 |
2 |
| Sesión magistral |
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18 |
22.5 |
40.5 |
| Resolución de problemas/ejercicios en el aula ordinaria |
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9 |
4 |
13 |
| Atención personalizada |
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1 |
0 |
1 |
| |
| Pruebas mixtas |
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2 |
0 |
2 |
| |
(*) En el caso de docencia no presencial, serán las horas de trabajo con soporte virtual del profesor.
(**) Los datos que aparecen en la tabla de planificación son de carácter orientativo, considerando la heterogeneidad de los alumnos |
Metodologías
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descripción |
| Actividades introductorias |
Actividades encaminadas a tomar contacto y recoger información de los alumnos y presentación de la asignatura. |
| Sesión magistral |
Exposición de los contenidos de la asignatura. |
| Resolución de problemas/ejercicios en el aula ordinaria |
Realización de diferentes actividades en el aula. |
| Atención personalizada |
Tiempo que cada profesor tiene reservado para atender y resolver dudas a los alumnos. |
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descripción |
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Atención a los alumnos fuera de las horas de clase, mediante entrevista personal, a horas convenidas. Envíe un e-mail a gerard.aragones@urv.cat para concertar visita. Debida a la emergencia sanitaria, la atención al estudiante se podrá realizar mediante reuniones online, en horarios concertados previamente por correo electrónico, o mediante otras herramientas virtuales. |
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Metodologías |
Competencias
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descripción |
Peso |
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| Resolución de problemas/ejercicios en el aula ordinaria |
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Resolución de problemas y ejercicios en el aula ordinaria por parte de los alumnos con asistencia de los profesores. |
45% |
| Pruebas mixtas |
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Los conocimientos teóricos adquiridos durante las sesiones magistrales se evaluarán mediante un solo examen que combinará tanto preguntas de desarrollo como preguntas objetivas cortas y preguntas tipo test. |
55% |
| Otros |
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Otros comentarios y segunda convocatoria |
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La asignatura se aprobará con un 5/10, debiendo tener una calificación mínima de 4/10 en el examen final para poder hacer media con las otras tareas evaluadas. La segunda convocatoria constará de un examen único y se mantendrá la nota y el peso de la nota del resto de actividades evaluadas. Los exámenes se realizarán de forma presencial. Debido a la emergencia sanitaria, en caso de confinamiento o de restricciones en la movilidad, las actividades evaluativas, incluidos los exámenes, se harían online en las fechas previstas. En el espacio Moodle de cada asignatura se podrá consultar la información actualizada. Durante las pruebas de evaluación, los teléfonos móviles, tablets y otros aparatos que no sean expresamente autorizados por la prueba, deben estar apagados y fuera de la vista. La realización fraudulenta de alguna actividad evaluativa de alguna asignatura tanto en soporte material como virtual y electrónico conlleva al estudiante la nota de suspenso de esta actividad evaluativa. Con independencia de ello, ante la gravedad de los hechos, el centro puede proponer la iniciación de un expediente disciplinario, que será incoado mediante resolución del rector o rectora. |
| Básica |
R J Geraghty, A Capes-Davis, J M Davis, J Downward, R I Freshney, I Knezevic, R Lovell-Badge, J R W , Guidelines for the use of cell lines in biomedical research, , British Journal of Cancer (2014) 111, 1021–1046
edited by J.M. Davis, Basic cell culture : a practical approach, 2nd, New York : Oxford University Press, cop. 2002
edited by Cheryl D. Helgason and Cindy L. Miller, Basic cell culture protocols, 3rd, Totowa, N.J. : Humana Press , 2005
Freshney, R. Ian, Culture of animal cells : a manual of basic technique, 5th, Hoboken, N.J. : Wiley, cop. 2005
Freshney, R. Ian, Culture of animal cells: a manual of basic technique and specialized applications, 6th, Hoboken, New Jersey : Wiley-Blackwell, cop. 2010
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| Complementaria |
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(*)La Guía docente es el documento donde se visualiza la propuesta académica de la URV. Este documento es público y no es modificable, excepto en casos excepcionales revisados por el órgano competente o debidamente revisado de acuerdo la normativa vigente. |
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